Las cochinillas harinosas, cochinillas blancas o cochinillas algodonosas son insectos en la familia Pseudococcidae, insectos "escamas" que habitan en climas cálidos y húmedos. Muchas especies son consideradas plagas ya que se alimentan de los jugos de las plantas de invernaderos, plantas del hogar y árboles subtropicales y también son vectores de varias enfermedades de las plantas.
Distribución Las cochinillas algodonosas se presentan en todo el mundo. Existen numerosas especies en la ecozona Paleártica y una cantidad menor en la ecozona del Neotrópico.
Descripción
Las cochinillas algodonosas presentan dimorfismo sexual (los sexos poseen diferencias morfológicas). Las hembras retienen las características de ninfas, presentando una morfología reducida, sin alas, aunque a diferencia de numerosas hembras de insectos escama, a menudo poseen patas y se pueden desplazar. Las hembras no cambian completamente y comúnmente son neoténicas (presentando características de ninfas). Los machos adultos poseen alas. Dado que las cochinillas blancas (como también todos los otros Hemiptera) son insectos con hemimetabolismo, ellos no sufren una metamorfosis completa, o sea no existen etapas larval y de pupa, y las alas no se desarrollan internamente. Las cochinillas blancas machos experimentan un cambio radical durante su ciclo de vida, transformándose de ninfas ovoides sin alas a adultos voladores.
Las hembras de la cochinilla de la India se alimentan de la savia de las plantas, normalmente en las raíces u otras partes de la planta, y en unos pocos casos en la base de la fruta almacenada. Ellos se adosan a la planta y secretan una capa de cera polvorienta (de donde les viene el calificativo harinosa o algodonosa) que utilizan para protección mientras succionan los jugos de la planta. Los machos por su parte viven un lapso breve ya que no se alimentan durante su fase adulta y solo viven para fertilizar a las hembras. Las cochinillas de la harina de los cítricos vuelan hasta las hembras y se asemejan a mosquitos abultados.
Algunas especies de cochinillas harinosas colocan sus huevos (de 50 a 100) sobre la misma capa de cera que utilizan para protegerse; en otras especies las cochinillas nacen directamente de la hembra.
Control Si la planta infectada puede tolerar el frío, esta puede ser colocada en un alféizar por ejemplo durante temperaturas frías. Esto alejará las cochinillas hasta las hojas más alejadas de la ventana, permitiendo su eliminación con un trapo. Larvas y adultos de mariquitas se alimentan de cochinillas, y pueden ser usados como control de la infestación. Las cochinillas blancas pueden ser controladas usando el hongo Lecanicillium lecanii. Jabón insecticida es efectivo contra las cochinillas blancas. Una solución acuosa que contiene 50% v/v 2-Propanol and 1% v/v dodecilsulfato sódico (presente en la mayoría de detergentes de uso doméstico) es efectiva contra las cochinillas. El alcohol isopropílico disuelve la capa de cera exterior, mientras que el dodecilsulfato sódico ataca a las cochinillas harinosas. Diazinón puede ser usado, pero puede necesitar múltiples aplicaciones.
Géneros Acaciacoccus Acinicoccus Acrochordonus Adelosoma Agastococcus Albertinia Allomyrmococcus Allotrionymus Amonostherium Anaparaputo Anisococcus Annulococcus Anthelococcus Antoninia Antoninella Antoninoides Apodastococcus Artemicoccus Asaphococcus Asphodelococcus Asteliacoccus Atriplicicoccus Atrococcus Australicoccus Australiputo Balanococcus Bessenayla Bimillenia Birendracoccus Boninococcus Boreococcus Bouhelia Brasiliputo Brevennia Brevicoccus Callitricoccus Calyptococcus Cannococcus Capitisetella Cataenococcus Chaetococcus Chaetotrionymus Chileputo Chlorococcus Chnaurococcus Chorizococcus Chryseococcus Cintococcus Circaputo Cirnecoccus Clavicoccus Coccidohystrix Coccura Coleococcus Colombiacoccus Conicosoma Conulicoccus Coorongia Cormiococcus Criniticoccus Crisicoccus Crocydococcus Cryptoripersia Cucullococcus Cyperia Cypericoccus Cyphonococcus Dawa Delococcus Delottococcus Densispina Discococcus Distichlicoccus Diversicrus Drymococcus Dysmicoccus Eastia Ehrhornia Electromyrmococcus Epicoccus Erimococcus Eriocorys Erioides Erium Eucalyptococcus Eumirococcus Eumyrmococcus Eupeliococcus Euripersia Eurycoccus Exilipedronia Farinococcus Ferrisia Ferrisicoccus Fijicoccus Fonscolombia Formicococcus Gallulacoccus Geococcus Glycycnyza Gomezmenoricoccus Gouxia Greenoripersia Grewiacoccus Hadrococcus Heliococcus Heterococcopsis Heterococcus Heteroheliococcus Hippeococcus Hopefoldia Humococcus Hypogeococcus Iberococcus Idiococcus Indococcus Inopicoccus Ityococcus Kenmorea Kermicus Kiritshenkella Lachnodiella Lachnodiopsis Lacombia Laingiococcus Laminicoccus Lankacoccus Lantanacoccus Lenania Leptococcus Leptorhizoecus Liucoccus Lomatococcus Londiania Longicoccus Maconellicoccus Macrocepicoccus Maculicoccus Madacanthococcus Madagasia Madangiacoccus Madeurycoccus Malaicoccus Malekoccus Mammicoccus Marendellea Mascarenococcus Maskellococcus Mauricoccus Melanococcus Metadenopsis Metadenopus Miconicoccus Mirococcopsis Mirococcus Miscanthicoccus Misericoccus Mizococcus Mollicoccus Mombasinia Moystonia Mutabilicoccus Nairobia Natalensia Neochavesia Neoclavicoccus Neoripersia Neosimmondsia Neotrionymus Nesococcus Nesopedronia Nesticoccus Nipaecoccus Novonilacoccus Octococcus Odacoccus Ohiacoccus Oracella Orococcus Orstomicoccus Oxyacanthus Palaucoccus Palmicultor Paludicoccus Pandanicola Papuacoccus Paracoccus Paradiscococcus Paradoxococcus Paraferrisia Paramococcus Paramonostherium Paramyrmococcus Parapaludicoccus Parapedronia Paraputo Pararhodania Paratrionymus Parkermicus Paulianodes Pedrococcus Pedronia Peliococcopsis Peliococcus Pellizzaricoccus Penthococcus Peridiococcus Phenacoccus Phyllococcus Pilococcus Planococcoides Planococcus Pleistocerarius Plotococcus Poecilococcus Polystomophora Porisaccus Porococcus Prorhizoecus Prorsococcus Pseudantonina Pseudococcus Pseudorhizoecus Pseudorhodania Pseudoripersia Pseudotrionymus Puto Pygmaeococcus Quadrigallicoccus Rastrococcus Renicaula Rhizoecus Rhodania Ripersia Ritsemia Rosebankia Saccharicoccus Sarococcus Scaptococcus Seabrina Serrolecanium Seyneria Spartinacoccus Sphaerococcus Spilococcus Spinococcus Stachycoccus Stemmatomerinx Stipacoccus Strandanna Stricklandina Strombococcus Synacanthococcus Syrmococcus Tangicoccus Tasmanicoccus Telocorys Tibetococcus Tomentocera Trabutina Tridiscus Trimerococcus Trionymus Trochiscococcus Turbinococcus Tylococcus Tympanococcus Ventrispina Villosicoccus Volvicoccus Vryburgia Xenococcus Yudnapinna
Referencias
Bibliografía Jahn, G. C. and J.W. Beardsley 1994. Big-headed ants, Pheidole megacephala: Interference with the biological control of gray pineapple mealybugs. In D.F. Williams [ed.] "Exotic Ants: Biology, Impact and Control of Introduced Species." Westview Press, Oxford, 199-205. Jahn, G. C. and J.W. Beardsley 1998. Presence / absence sampling of mealybugs, ants, and major predators in pineapple. J. Plant Protection in the Tropics 11(1):73-79. Jahn, Gary C., J. W. Beardsley and H. González-Hernández 2003. A review of the association of ants with mealybug wilt disease of pineapple. Proceedings of the Hawaiian Entomological Society. 36:9-28.
Enlaces externos
NCIPM (National Centre for Integrated Pest Management) - Cotton Mealybugs BBC gardening advice, mealybugs CISR - Vine Mealybug Center for Invasive Species Research summary on Vine Mealybug
En el sitio web de la Universidad de Florida / Institute of Food and Agricultural Sciences Featured Creatures: Hypogeococcus pungens, no common name Nipaecoccus nipae, coconut mealybug
Categoría:Insectos plaga en agricultura